三種細胞免疫熒光染色操作步驟

免疫熒光染色的主要原理是利用抗原 抗體之間的特異性結合來顯示目的蛋白，主要包括蛋白和一抗結合，其次是帶有熒光基團的二抗識別并結合一抗，熒光顯微鏡下即可觀察到熒光，下文主要列舉了三種細胞免疫熒光染色的實驗步驟。

zo-1的免疫 熒光，步驟如下：

1、細胞在蓋片上生長融合到95%-100%時，從孵箱中取出。

2、用預溫的1×PBS 洗3次，每次10分鐘

3、4%的甲醛室溫固定20-30分鐘

4、1×PBS洗3次，每次10分鐘

5、0.2%Triton X-100透化2-5分鐘

6、1×PBS洗3次，每次10分鐘

7、5%BSA室溫封閉30分鐘

8、加一抗(用1%BSA稀釋)放在濕盒里，4度過夜

9、1×PBS洗3次，每次10分鐘

10、加二抗(用1%BSA稀釋)30分鐘，閉光!!!

11、1×PBS洗3次，每次10分鐘

12、95%甘油封片

注：4%甲醛，0.2%Triton，5%BSA均用1×PBS稀釋

從大鼠分離的T細胞能否直接做細胞免疫熒光

細胞爬片的免疫熒光步驟基本一致：

1.取出細胞爬片放到35mm或60mm用過的細胞培養皿里，PBS洗三遍。

注意：有的時候作的細胞爬片可能比較小，因此夾取的時候要小心，注意 反正面，放在皿里洗比較方便，避免了來回夾取，另外洗的時候加PBS不要太沖，不要細胞沖下來。洗的時候我都是多加PBS，稍晃一下就倒掉，沒有等5分鐘或10分鐘。

2. 4%冷的多聚甲醛固定20分鐘，PBS洗三遍。

3. 0.2%Triton X-100通透10分鐘，PBS洗三遍。

4. 與二抗相同宿主的血清封閉30分鐘，PBS洗三遍。

5. 一抗4度濕盒內過夜，也可37度2小時，感覺前者效果好，PBS洗三遍。

6.二抗室溫2小時(避光)，或者37度1半小時，PBS洗三遍。

7.最好用DAPI染核，然后直接照熒光片。

8.蒸餾水洗掉PBS，甘油封片，指甲油封片子的四周，因為甘油不象樹脂那樣會干，所以不用指甲油封的話會弄的一塌糊涂。

細胞免疫熒光簡單實驗步驟如下:

1.漂洗血清蛋白H7.2-7.4 37度 PBS 2小時.

2.-20度甲醇固定20分鐘后,自然、干燥 10分鐘

3.PBS洗凈:3min*3

4.1%Triton:25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS

5.PBS洗凈:2*5min

6.羊血清封閉：37度，20分鐘

7.一抗，4度過夜，一般要大于18小時或者37度　1-2小時

8.4度　PBS洗凈，3min*5次

9.二抗　37度小于一小時

10.37度　PBS洗凈，3*5min

涼干封片(封閉液PH8.5)

不管采用何種方法，在使用PBS緩沖液漂洗時，都要漂洗干凈并且要測下pH值，可以使用PBS多清洗幾次，也可以延長PBS清洗時間，如果結果背景較高可以延長漂洗的次數和時間。