細胞適當餓一餓,更容易出結果!
細胞實驗范疇,“血清饑餓” 十分關鍵。它是通過減少甚至完全去除培養基中的血清(像常用的胎牛血清 FBS)使細胞處于低營養或靜止狀態的實驗技術。血清在細胞培養基中極為重要,含多種生長因子、激素、營養物質,是細胞生長增殖的 “養分庫”。血清減少或去除后,細胞便陷入 “饑餓狀態”。
細胞饑餓的神奇用途
細胞饑餓這一看似簡單的操作,卻蘊含著巨大的科研價值,在多個領域發揮著不可或缺的作用。
(一)同步細胞周期,研究細胞特定階段行為
細胞培養時,細胞處于不同細胞周期時相會影響實驗重復性。血清饑餓技術可使細胞停滯在 G0/G1 期,實現細胞周期同步化,讓所有細胞處于相同生長起始狀態。這樣便于科研人員處理特定細胞群體,使其同步分裂,利于研究特定細胞周期階段的生物學行為。例如在研究細胞周期調控蛋白(如 Cyclin D1、p27)時,同步化細胞能提供更準確穩定的實驗數據,清晰揭示這些蛋白在細胞周期中的調控機制。重新添加血清后,細胞從 G0 期進入 S 期,科研人員可密切觀察這一關鍵生長轉變過程,深入探究細胞周期奧秘。
(二)誘導細胞凋亡或自噬,探索細胞應激反應
血清缺失會導致細胞生長因子(如 EGF、IGF-1)不足,細胞會啟動自我保護機制,激活凋亡(如 Caspase-3)或自噬(如 LC3-II)通路,這為研究細胞應激反應提供了良好模型。在癌癥研究領域,了解癌細胞在營養匱乏下的存活機制對攻克癌癥至關重要。通過細胞饑餓實驗,能觀察癌細胞應對營養不足的方式,尋找其生存弱點,為開發抗癌藥物提供理論依據。同時,血清饑餓可用于評估藥物對凋亡 / 自噬的調控作用,助力篩選具有潛在治療價值的藥物。
(三)提高轉染或病毒感染效率,助力基因研究
基因研究中,將外源基因(質粒、siRNA)或病毒(如慢病毒)導入細胞是關鍵技術,但導入效率常不理想。血清饑餓為提高轉染或病毒感染效率提供了新思路。它使細胞代謝減緩,處于相對放松狀態,更易吸收外源物質,還能減少血清中 RNase/DNase 對核酸的降解,保護外源基因完整性。研究表明,轉染前對細胞進行 6 - 24 小時血清饑餓處理,可顯著提高轉染效率,如在 HEK293T 細胞實驗中,血清饑餓后轉染效率明顯提升,有力支持了基因功能研究和應用。
(四)研究信號通路激活,明確通路調控機制
血清中豐富的生長因子雖為細胞提供營養,卻也給研究特定信號通路帶來背景干擾。血清饑餓可消除這一干擾,使科研人員更清晰地明確特定通路調控機制。在研究 MAPK、PI3K-AKT 等信號通路時,通常先對細胞進行 12 - 24 小時血清饑餓處理,使其處于 “安靜狀態”,再用特定刺激(如 EGF、胰島素)激活通路。通過檢測磷酸化蛋白(如 p-ERK、p-AKT)動態變化,可深入了解信號通路激活過程和調控機制,為細胞信號傳導研究提供重要線索。
(五)模擬體內低營養環境,研究細胞適應性
人體內細胞并非總處于營養充足環境,如腫瘤微環境或胚胎發育階段,常面臨缺血、缺氧或營養限制等挑戰。細胞饑餓可在實驗室模擬這些體內低營養環境,研究細胞在極端條件下的適應性反應。在腫瘤研究中,發現腫瘤細胞在血清饑餓下會代謝重編程,增強糖酵解獲取能量,維持生長增殖。在干細胞研究中,關注干細胞在低血清條件下如何維持干性,這對干細胞治療和再生醫學發展意義重大。
實操要點:細胞饑餓的正確 “喂養” 方式
(一)時間控制是關鍵
細胞饑餓實驗中,時間控制至關重要,稍有偏差可能影響實驗結果。通常,細胞饑餓時間為 12 - 48 小時,此范圍內細胞對血清饑餓有明顯反應且能保持生理穩定。若時間過長,細胞可能因營養匱乏大量死亡 。不同細胞對饑餓時間耐受性不同,如小鼠胚胎成纖維細胞、人肺胚胎成纖維細胞、小鼠腸道原代成纖維細胞無血清饑餓 12 小時狀態良好。科研人員需通過預實驗優化饑餓時間,確定適合目標細胞的時長,保證實驗準確性。
(二)血清濃度的巧妙調整
血清濃度是細胞饑餓實驗的關鍵因素之一。可采用完全饑餓(0% FBS)或低血清(0.5 - 1% FBS)處理。完全饑餓能使細胞快速進入饑餓狀態,適合研究極端營養缺乏下細胞行為;低血清處理相對溫和,適合對營養變化敏感的細胞 。原代細胞較傳代細胞系更敏感,血清饑餓時通常需采用低血清濃度,以維持細胞活性和功能。科研人員應根據細胞類型特點,靈活調整血清濃度,為細胞創造合適的饑餓環境。
(三)替代方案的選擇與運用
除降低或去除血清外,無血清培養基也是可行的替代方案。它可精確控制細胞培養營養成分,避免血清批次差異影響,為細胞提供穩定生長環境。使用時需添加必需生長因子,如 ITS(胰島素 - 轉鐵蛋白 - 硒)。胰島素促進細胞生長,調節攝取和利用,有抗凋亡作用;轉鐵蛋白參與鐵離子轉運代謝,是胞外抗氧化劑;硒是多種抗氧化酶的關鍵組分。合理添加這些生長因子,無血清培養基可滿足細胞生長和實驗研究需求。
細胞饑餓的常見問題與解決方案
(一)細胞大量死亡的應對
在細胞饑餓實驗中,若血清饑餓后出現細胞大量死亡,多因饑餓時間過長或細胞不耐受。原代細胞對營養缺乏敏感,易因長時間饑餓而死亡。此時可縮短饑餓時間,降低細胞在低營養環境的暴露時長,使其適應而不死亡。采用低血清(0.5%)處理也有效,能提供營養支持,維持基本生理功能,同時模擬饑餓環境。這些調整可提高細胞存活率,確保實驗順利。
(二)并非所有細胞都需要饑餓
并非所有細胞都需要血清饑餓。細胞生長特性和代謝需求不同,決定了它們對血清饑餓的反應差異。快速增殖細胞(如 HeLa 細胞),正常培養下生長快,血清饑餓對其影響小,可能無需饑餓處理。而靜止期細胞(如成纖維細胞)生長慢,對營養變化敏感,血清饑餓可使其進入靜止狀態,同步細胞周期,實驗效果更明顯。實驗時要了解目標細胞特性,參考文獻,判斷是否需血清饑餓處理,以獲最佳實驗效果。


