如何通過OD值判斷細菌生長階段

微生物生長曲線分析的核心技術與實踐要點

一、基本原理與實驗設計

1. OD值測量原理

光密度（OD???）反映菌液在600nm波長下的吸光度，與培養液中菌體密度呈正相關（朗伯-比爾定律）。需注意：

? 線性范圍限制：僅在OD???=0.1~0.8時與活菌濃度呈線性關系（因高濃度下光散射效應增強）。

? 校正必要性：使用無菌培養基調零，扣除培養基成分（如色素、膠體顆粒）的背景干擾。

2. 標準操作流程

步驟

操作規范

接種與培養

取對數中期菌種接種至新鮮培養基（接種量1%~5%），最適溫度下恒溫振蕩培養（如細菌37℃）

取樣頻率

遲緩期每60分鐘取樣；對數期每30分鐘；穩定期后每1~2小時（依菌種倍增時間調整）

OD值測定

分光光度計檢測前混勻菌液，比色皿光程1cm，測定后立即稀釋超線性范圍樣本

曲線繪制

時間（h）為橫軸，OD???為縱軸，擬合"S"型生長曲線

二、生長階段特征與判定標準

1. 遲緩期（Lag Phase）

? 判定依據：OD???≤0.1且變化率＜0.02/h

? 生物學本質：菌體合成酶系及適應新環境，細胞數量未顯著增加

? 誤差排除：若OD持續下降，需驗證菌種活性或培養基兼容性

2. 對數期（Exponential Phase）

? 核心特征：

? OD???呈指數增長（曲線斜率恒定）

? 倍增時間（td） 

? 實踐要點：

? 嚴格對數期：OD???每30~60分鐘翻倍（如0.2→0.4→0.8）

? 最佳操作窗口：OD???=0.3~0.6時取樣（此階段菌體代謝旺盛，形態均一）

3. 穩定期（Stationary Phase）

? 轉折標志：

? OD變化率下降＞80%（如增速從0.3/h降至＜0.05/h）

? 連續3次測量波動＜±0.02（提示營養耗盡/代謝產物累積）

? 驗證方法：同步平板菌落計數（CFU），活菌數達峰值且維持穩定

4. 衰退期（Death Phase）

? 明確信號：

? OD???持續下降（降幅＞0.05/h）

? 鏡檢可見細胞自溶、碎片增多或芽孢釋放（芽孢桿菌屬）

三、關鍵干擾因素與誤差控制

1. OD值與活菌數的偏差機制

場景

原因分析

解決方案

穩定期OD維持高位

死細胞未裂解

結合FDA染色或CFU驗證

對數期OD異常波動

菌體聚集成團

超聲處理或添加分散劑（如Tween80）

低濃度區（OD＜0.1）

超出檢測限

延長培養時間觀察趨勢

2. 菌種特異性校準

? 細菌：通常OD???峰值1.0~2.0（如大腸桿菌）

? 酵母：OD???可達5.0+（因細胞尺寸大）

? 絲狀菌：需改用干重法或DNA含量測定（OD值不適用）

四、標準化操作體系（以大腸桿菌為例）

接種OD???=0.05

遲緩期：OD??? 0.05→0.1

對數期：OD??? 0.1→0.8

穩定期：OD??? 0.8~0.9

衰退期：OD???↓至0.6

配套驗證措施：

? 電鏡觀察細胞分裂相（對數期＞90%細胞分裂）

? 監測葡萄糖濃度（對數期速降，穩定期趨零）

? 檢測pH變化（產酸菌pH持續下降提示對數期）

五、結論與行業應用

1. 核心價值：OD值動態監測是低成本實時監控發酵過程的黃金標準

2. 升級策略：

? 聯用在線傳感器（如pH、溶氧探頭）構建多參數模型

? 結合qPCR檢測rRNA基因拷貝數，精準量化活性生物量

3. 警示點：

? 高密度發酵時需稀釋樣本至線性區間

? 色素產物菌種改用特定波長（如放線菌測OD???）